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类别:生物试剂
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产品概述产品描述OmniMAX 2 T1来源于大肠杆菌K12,经过改良后适用于所有的克隆应用,包括Gateway技术。此外,OmniMax 2 T1还能有效转化高度甲基化的DNA。由于该菌株携带tonA基因突变,因此对T1和T5噬菌体感染具有抗性···
产品概述
产品描述
OmniMAX 2 T1来源于大肠杆菌K12,经过改良后适用于所有的克隆应用,包括Gateway技术。此外,OmniMax 2 T1还能有效转化高度甲基化的DNA。由于该菌株携带tonA基因突变,因此对T1和T5噬菌体感染具有抗性。因为OmniMax 2 T1感受态缺少大肠杆菌K12 限制性系统 (mcrA Δ(mrr hsdRMS-mcrBC)),所以它们还能够高效转化高度甲基化的DNA。经pUC19质粒转化检测,OmniMax 2 T1感受态细胞的转化效率可达109 cfu/μg DNA以上。
产品优势
✽ 高转化效率:>1x109 cfu/µg pUC19 DNA
✽ 适合于所有克隆应用
产品组分
组分 | CC96127-01 | CC96127-02 |
OmniMAX 2 T1化学感受态 | 10 × 100 μL | 100 × 100 μL |
基因型:F´ proAB+ lacIq lacZΔM15 Tn10 (TetR) Δ(ccdAB) mcrA Δ(mrr hsdRMS-mcrBC) φ80(lacZ)ΔM15 Δ(lacZYA-argF) U169 endA1 recA1 supE44 thi-1 gyrA96 relA1 tonA panD
产品应用
OmniMAX 2 T1适用于所有的克隆应用。
实验流程
1. 解冻感受态细胞:从-80℃取感受态细胞,放置在冰浴或冰水浴中融化,约5-10 min,放置时间过长会影响转化效率。
2. DNA样品的转化:每100 μL感受态加入待转化DNA样品(例如质粒、连接产物或重组产物等)约10 μL,然后轻轻弹击管底约2-3次,立即冰上静置孵育30 min。
✽ 加入待转化DNA样品体积通常不宜超过感受态细胞体积的10%。
✽ 加入待转化DNA样品后应轻柔操作,避免使用移液枪吹打混匀。
✽ 如果用于质粒的转化扩增,冰浴静置约10 min后可以直接涂板并培养过夜;如果用于连接产物或重组产物的转化,建议冰浴静置30分钟并严格执行后续的热激处理和复苏培养等步骤,以提高转化效率。
3. 热激处理:将冰浴后的离心管快速置于42℃水浴中,静置热激90 s。随后立即转移至冰水浴中静置2-3 min以快速冷却。
✽ 热激及转移至冰浴过程中请勿晃动离心管。
4. 复苏培养:加入900 μL 37℃预热的LB或SOC培养基,颠倒数次混匀,37℃摇床约220 rpm复苏培养45 min。
5. 收菌涂板:如果用于质粒的转化扩增,建议直接取50-100 μL进行涂板即可;如果用于连接产物或重组产物的转化,建议先5000 g,1 min室温离心沉淀细菌,吸除约900-950 μL上清,然后用剩余的约50-100 μL菌液重悬,涂布到含相应抗生素的LB平板上。
6. 过夜培养:将平板倒置放于37℃培养箱培养过夜。
✽ 培养前需要将平板在超净台中稍微晾至无明显水渍,有利于形成单克隆。
保存条件
-80℃保存;请勿将本品置于-20℃或者液氮中保存。
相关参数
感受态类型 | 化学感受态 |
感受态菌株名称 | OmniMAX 2 T1 |
种属 | 大肠杆菌 |
转化效率 | 高效率 (>1x10^9 cfu/µg pUC19 DNA) |
菌株用途 | 克隆 |
应用特征 | 适用于所有的克隆应用 |
是否可克隆甲基化DNA | 是 |
是否可进行蓝白斑筛选 | 是 (培养基中需加入IPTG和X-gal) |
菌株抗性 | 四环素 |
培养基 | LB |
培养条件 | 37 ℃,有氧 |
诱导方法 | - |
保存条件 | -80 ℃ |
运输条件 | 干冰 |
包装规格 | 管装 (100 µL/管) |
出品公司 | ToloBio |
常见问题解答
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